Giallumi della vite in Cile

 
Nicola Fiore
Universidad de Chile, Facultad de Ciencias Agronómicas, Departamento de Sanidad Vegetal, Avenida Santa Rosa 11315, La Pintana, Santiago, Chile

Introduzione

La vite (Vitis vinifera L.) è ampiamente coltivata in Cile, dove i vigneti coprono rispettivamente 145.873 e 52.234 ha con varietà di uva da vino e da tavola. Le principali varietà di uve da vino sono Cabernet Sauvignon, Merlot, Carménère, Chardonnay, Sauvignon blanc e Syrah, mentre le cultivar da tavola prevalenti sono Thompson Seedless, Red Globe, Flame Seedless, Crimson Seedless e Superior (CIREN 2014; ODEPA 2016). L'espansione relativamente rapida della superficie destinata alla vite ed un programma di certificazione sanitaria limitato hanno portato all'ampia diffusione di varie malattie, comprese quelle associate alla presenza di fitoplasmi noti come giallumi della vite (GY).

Giallumi della vite

La presenza di GY in V. vinifera in Cile è stata riportata nel 1971 sulla base dell'osservazione dei sintomi, tuttavia le prime prove di laboratorio per la presenza di fitoplasmi nella vite risalgono all'inizio del 2000 mediante microscopia elettronica e diagnostica molecolare (Gajardo et al., 2003; Herrera e Madariaga, 2003; Bertaccini et al., 2004). Ad oggi sono stati identificati in vite in Cile fitoplasmi appartenenti a sei sottogruppi ribosomici (16SrI-B, 16SrI-C, 16SrIII-J, 16SrV-A, 16SrVII-A e 16SrXII-A) (Gajardo et al., 2009; Fiore et al., 2015b), ma non ci sono informazioni sulla loro prevalenza nei vigneti. I sintomi osservati generalmente sono l’arrotolamento verso il basso delle foglie, la lignificazione incompleta di tralci, il disseccamento dei grappoli ed il deperimento delle piante colpite. Si osservano inoltre arrossamento ed ingiallimento precoce delle foglie in varietà rosse e bianche, rispettivamente (Figure 1 e 2). Il 16SrIII-J è il phytoplasma più diffuso in Cile, ove infetta non solo la vite ma anche molte altre specie legnose ed erbacee (González et al., 2011, Fiore et al., 2015b; Quiroga et al., 2015; 2017a), e la bozza della sua sequenza genomica è stata recentemente pubblicata (Zamorano e Fiore, 2016).

GY_1
Figura 1. Arrotolamento verso il basso delle foglie in Cabernet Sauvignon.

Prove di trasmissione hanno dimostrato che Paratanus exitiosus e Bergallia valdiviana possono trasmettere questo fitoplasma sia alla vinca [Catharanthus roseus (L.) G. Don] che alla vite (Quiroga et al., 2018). P. exitiosus e B. valdiviana sono ampiamente distribuiti in tutto il paese e sono stati comunemente catturati sulle erbacee nei vigneti cileni ed occasionalmente si nutrono anche su vite (Fiore et al., 2015a; Quiroga et al., 2015). Scaphoideus titanus non è mai stato trovato in Cile, tuttavia studi recenti hanno indicato che sia le condizioni climatiche attuali sia i cambiamenti climatici previsti nella zona centrale del Cile, sono appropriati per la sua sopravvivenza ed insediamento (Quiroga et al., 2017b). Amplicephalus curtulus, in cui è stata individuata la presenza di fitoplasmi 16SrI-B e 16SrXII-A, è stato frequentemente catturato nelle erbe infestanti presenti nei vigneti cileni, ma non è stato possibile determinare se trasmette questi fitoplasmi alle viti (Longone et al., 2011).

Alcune erbe infestanti presenti nei vigneti o nei loro dintorni sono state individuate positive per alcuni fitoplasmi rilevati anche in vite. In particolare, in Galega officinalis è stato identificato il fitoplasma 16SrVII-A, in Convolvulus arvensis 16SrI-B, 16SrVII-A e 16SrXII-A ed in Polygonum aviculare 16SrI-B e 16SrVII-A (Longone et al., 2011). È importante notare che C. arvensis svolge un ruolo fondamentale nell'epidemiologia del fitoplasma 16SrXII-A, responsabile del "bois noir", che in Europa è trasmesso principalmente dal cixiidae Hyalesthes obsoletus, non individuato finora in Cile.

BIBLIOGRAFIA

Bertaccini A, Botti S, Fiore N, Gajardo A, Montealegre J (2004) Identification of a new phytoplasma(s) infecting grapevine with yellows in Chile. In: Abstract of XV Meeting of IOM, Athens, GA, USA 37:63-64.

CIREN (2014) Evolución superficie frutícola nacional y sus principales especies. http://bibliotecadigital.ciren.cl/handle/123456789/1226

Fiore N, Longone V, Gonzalez X, Zamorano A, Pino AM, Quiroga N, Picciau L, Alma A, Paltrinieri S, Contaldo N, Bertaccini A (2015a) Transmission of 16SrIII-J phytoplasma by Paratanus exitiosus (Beamer) leafhopper in grapevine. Phytopath Moll 5:S43–S44.

Fiore N, Zamorano A, Pino AM (2015b) Identification of phytoplasmas belonging to the ribosomal groups 16SrIII and 16SrV in Chilean grapevines. Phytopath Moll 5:32–36.

Gajardo A, Botti S, Montealegre J, Fiore N, Bertaccini A (2003) Survey and phytoplasmas identified in Chilean grapevines.- In: Extended abstracts 14th Meeting of the International Council for the Study of Virus and Virus-like Diseases of the Grapevine (ICVG) - Locorotondo (BA), Italy, pp 85-86.

Gajardo A, Fiore N, Prodan S, Paltrinieri S, Botti S, Pino AM, Zamorano A, Montealegre J, Bertaccini A (2009) Phytoplasmas associated with grapevine yellows disease in Chile. Plant Dis 93:789–796.

González F, Zamorano A, Pino AM, Paltrinieri S, Bertaccini A, Fiore N (2011) Identification of phytoplasma belonging to X-disease group in cherry in Chile. Bull Insectol 64(Suppl):S235–S236.

Herrera G, Madariaga M (2003) Evidencias inmunológicas, microscópicas y moleculares de la presencia de fitoplasmas en vides. Agricultura Técnica 63:15-22

Longone V, Gonzáles F, Zamorano A, Pino AM, Araya J, Díaz V, Paltrinieri S, Calari A, Bertaccini A, Picciau L, Alma A, Fiore N (2011) Epidemiological aspects of phytoplasmas in Chilean grapevines. Bull of Insectol 64(Suppl):S91-S92.

ODEPA (2016) Catastro Vitícola Nacional SAG. https://www.odepa.gob.cl/wp-content/uploads/2018/03/catastro-vides-2017.pdf

Quiroga N, González X, Zamorano A, Pino AM, Picciau L, Alma A, Paltrinieri S, Contaldo N, Bertaccini A, Fiore N (2015) Transmission of 16SrIII-J phytoplasma by Bergallia valdiviana Berg 1881 leafhopper. Phytopath Moll 5(1-Suppl):S47–S48.

Quiroga N, Bustamante M, Gamboa C, Molina J, Zamorano A, Fiore N (2017a) 16SrIII-J phytoplasmas infecting lettuce and Swiss chard crops in Chile. Phytopath Moll 7(2):91-94..

Quiroga N, Ivulic D, Lagos J, Saavedra M, Sandoval-Rodríguez A, Infante R, Morales L, Fiore N (2017b) Risk analysis of the establishment of Scaphoideus titanus, vector of “flavescence dorée” phytoplasma in grapevine, under current and estimated climate change conditions in Chile. Phytopath Moll 7(1):39-44.

Quiroga N., Longone V, González X, Zamorano A, Pino AM, Picciau L, Alma A, Paltrinieri S, Contaldo N, Bertaccini A, Fiore N (2018) Transmission of 16SrIII-J phytoplasmas by Paratanus exitiousus (Beamer) and Bergallia valdiviana Berg 1881 leafhoppers.Phytopath. Medit. (submitted).

Zamorano A, Fiore N (2016) Draft genome sequence of 16SrIII-J phytoplasma, a plant pathogenic bacterium with a broad spectrum of hosts. Gen Announc 4(3):e00602-16.